10×BN轉(zhuǎn)膜緩沖液
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產(chǎn)品編號
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產(chǎn)品名稱
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規(guī)格
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BC600P
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10×BN轉(zhuǎn)膜緩沖液（粉末）
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1升
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● 簡介：
10×BN轉(zhuǎn)膜緩沖液（10×Blue Native Transfer Buffer）適用于BN蛋白電泳后凝膠上非變性蛋白的轉(zhuǎn)膜。本轉(zhuǎn)膜液配制便捷，稀釋后無需調(diào)節(jié)pH值，pH約為7.5-7.7。該緩沖液最終可配成10升即用型1×緩沖液（根據(jù)需求補加甲醇）。
● 保存和運輸：
粉末裝常溫保存，常溫運輸，兩年有效；配成10×轉(zhuǎn)膜緩沖液后4℃貯存，一年有效；加入甲醇的即用型轉(zhuǎn)膜緩沖液4℃貯存，一個月有效。
● 配制方法：
將10×轉(zhuǎn)膜緩沖液粉末全部溶解于1升超純水中，徹底溶解，即配成10×轉(zhuǎn)膜緩沖液。
根據(jù)下表配制成1×即用型轉(zhuǎn)膜緩沖液
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1×即用型轉(zhuǎn)膜緩沖液
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500 ml
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1 L
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2 L
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10×轉(zhuǎn)膜緩沖液
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50 ml
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100 ml
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200 ml
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無水甲醇
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甲醇終濃度0-20%
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超純水
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定容至 500 ml
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定容至 1升
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定容至 2升
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不要調(diào)節(jié)pH
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注：轉(zhuǎn)膜緩沖液中加入甲醇對蛋白有固定作用，轉(zhuǎn)膜分子量較大的蛋白少加或不加甲醇，轉(zhuǎn)膜分子量較小的蛋白要加至多20%的甲醇。非變性蛋白的轉(zhuǎn)膜可以不加甲醇。
● 使用方法：
1. BN電泳介紹：
Blue Native PAGE（BN-PAGE）是一種從生物樣品（質(zhì)膜，胞漿等）中分離分子量10 kD-10 M kD 范圍的蛋白質(zhì)復(fù)合物的電泳技術(shù)。其原理是用溫和去污劑(如 DDM，digitonin)將蛋白復(fù)合體從細(xì)胞膜中以近似天然的狀態(tài)分離出來，Blue Native PAGE （BN-PAGE）是用考馬斯亮藍(lán) G-250 代替 SDS與蛋白結(jié)合而使其帶負(fù)電荷，根據(jù)蛋白分子量不同在 PAGE膠中得到分離。BN-PAGE由于考馬斯亮藍(lán)G-250存在，使蛋白都覆蓋上負(fù)電荷，可以分離堿性蛋白（pI＞7）。BN電泳可以選擇Blue/Clear 非變性凝膠電泳試劑盒(U型板3-12%預(yù)制膠，通用型)（貨號：RTD6139-0312或RTD6139-0416）
2. 電泳后凝膠預(yù)處理（可選步驟）：
凝膠浸泡于適量1×即用型BN轉(zhuǎn)膜緩沖液（加終濃度0.1% SDS）中，搖床慢搖10分鐘。
注：凝膠浸泡在含SDS緩沖液中，能讓蛋白帶上更多的負(fù)電荷，有利于蛋白的轉(zhuǎn)膜。
3. 轉(zhuǎn)膜：
3.1轉(zhuǎn)膜方法：BN電泳后的轉(zhuǎn)膜建議用濕轉(zhuǎn)法。
3.2膜的選擇：BN電泳轉(zhuǎn)膜必須使用PVDF膜，不能用NC膜（NC膜會與考馬斯亮藍(lán)G-250不可逆結(jié)合，很難清除干凈）。根據(jù)蛋白大小選擇膜的孔徑。一般說來，大于20 kD蛋白選擇0.45 μm孔徑，低于20 kD選擇0.22 μm孔徑。PVDF膜使用前要用無水甲醇潤濕活化。
3.3 三明治結(jié)構(gòu)：轉(zhuǎn)膜三明治結(jié)構(gòu)與傳統(tǒng)轉(zhuǎn)膜相同，即根據(jù)“黑膠白膜”制作三明治，即膜置于轉(zhuǎn)膜夾芯正極一側(cè)，凝膠置于轉(zhuǎn)膜夾芯負(fù)極一側(cè)，這樣凝膠上帶負(fù)電荷的蛋白才能轉(zhuǎn)移到膜上。
蛋白轉(zhuǎn)膜三明治制作：
負(fù)極（電轉(zhuǎn)夾黑色面）-海綿墊-1層1 mm厚度濾紙-凝膠-膜-1層1 mm厚度濾紙-海綿墊-正
極（電轉(zhuǎn)夾白色面）
3.4 轉(zhuǎn)膜條件：
由于在非變性條件下，不同蛋白的空間結(jié)構(gòu)，聚合狀態(tài)，電荷數(shù)量都有不同，以下轉(zhuǎn)膜條件僅供參考，客戶針對自己的目的蛋白，最好經(jīng)過1-2次預(yù)實驗后，確定最佳的轉(zhuǎn)膜條件。
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蛋白大小
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穩(wěn)流
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建議時間
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降溫措施
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低于70kD
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150 mA
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1 小時
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不需要
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70-300 kD
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200 mA
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1.5-2 小時
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需要
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高于300 kD
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200 mA
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2.5-3.5 小時
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需要
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4. 洗膜：
PVDF膜用無水甲醇清洗10分鐘，徹底去除藍(lán)色G250。
5. 進(jìn)行后續(xù)WB操作：封閉-一抗-二抗-檢測。